オリゴ核酸医薬の不純物解析 ― IP-RP・HILIC・2D-LC-MSで複雑なプロファイルを解く
クロマトグラフィー

オリゴ核酸医薬の不純物解析 ― IP-RP・HILIC・2D-LC-MSで複雑なプロファイルを解く

アンチセンス(ASO)やsiRNAなどオリゴ核酸医薬の不純物解析を、原理から実務まで出典つきで解説する。 固相合成由来のショートマー(n-1)/ロングマー、脱プリン、ホスホロチオエート(PS)→PO変換やPSジアステレオマーという 難物を、ゴールドスタンダードのIP-RP LC-MS、直交するHILIC、そしてハートカット2D-LCのオンライン脱塩で解きほぐす。 HFIPとPFAS問題、非特異吸着(NSA)対策、HRMS/イオンモビリティ、EMA 2024の閾値まで、入門者にも専門家にも届く形でまとめる。

オリゴ核酸医薬(therapeutic oligonucleotides)は、希少疾患向けのニッチから、心血管疾患などを狙う ブロックバスターへと急拡大しています(例:高脂血症の siRNA 医薬 inclisiran の承認)。アンチセンス(ASO)・ 低分子干渉RNA(siRNA)・アプタマーなど、近年は20種類超が承認に至りました。一方で分子は複雑化し、 ホスホロチオエート(PS)骨格・糖修飾・GalNAcや脂質のバイオコンジュゲートを備えるようになりました。 本記事では、その不純物解析を原理から実務まで、出典つきで整理します。

この記事の読み方:第2章で「何を探すか(不純物の地図)」を押さえると、第3章以降の手法選択が腑に落ちます。 入門の方は各章冒頭・まとめ・用語集から、専門家の方は各手法・各論文まで深掘りしてください。 二次元分離の一般論は別記事「クロマトグラフィー最新技術動向」、検出側は「質量分析の最新技術動向」もどうぞ。

1. なぜ難しいのか ― 合成が生む多様な不純物

図解:合成が生む複雑性。固相合成で目的のオリゴ核酸鎖を伸ばす過程で、切断・副反応・保護基脱落など多様な不純物が生じる
図解:合成が生む複雑性 ― 固相合成で目的鎖を伸ばす過程で、切断・副反応・保護基脱落など多様な不純物が生じる。

オリゴ核酸は主に固相合成で作られ、その過程・保管中に多様な不純物が生じます。安全性・有効性の担保には、 これらを精密に分離・同定・定量する必要があります。

2. 不純物の地図 ― 何を探すか

図解:不純物の地図。プロセス由来(n-1/ロングマー)、分解(脱プリン・PS→PO)、PSジアステレオマー(各Pのキラル中心で数千種)
図解:不純物の地図 ― プロセス由来(n-1/ロングマー)、分解(脱プリン・PS→PO)、PSジアステレオマー(各Pのキラル中心で数千種)。
  • プロセス由来:カップリング失敗によるショートマー(n-1, n-2…)、二重カップリングによるロングマー(n+1, n+2…)
  • 分解由来脱プリン(depurination)、脱アミノ、そしてPS結合がPO(ホスホジエステル)へ変換した変異体。
  • 化学変異:保護基由来の付加体(例:N3-(2-シアノエチル)チミン, CNET)など。

PSジアステレオマーという難物

ホスホロチオエート結合は、各リン原子にキラル中心を作ります。20-mer なら理論上数千のジアステレオマーが生じ、 これがピークの広がり(diastereomeric noise)を招きます。従来はこの広がりを「抑える」方向でしたが、近年は 立体制御合成(stereocontrolled synthesis)で Sp/Rp 配置を作り分け、特定立体異性体を積極的に評価する流れも出ています (総説 Analytical Chemistry)。

3. IP-RP ― ゴールドスタンダード

図解:IP-RP。アルキルアミン(TEA/DBA/TBA)で対イオン化、HFIPで高感度(PFAS問題)、高温で直線化、bioinert/HPSでNSA対策
図解:IP-RP(ゴールドスタンダード)― アルキルアミン(TEA/DBA/TBA)で対イオン化、HFIPで高感度(PFAS問題)、高温で直線化、HPSでNSA対策。

イオンペア逆相クロマトグラフィー(IP-RP)は、高分解能とMS直結を両立し、オリゴ核酸分析の主役であり続けています。

機構とイオンペア試薬

負電荷のオリゴ骨格と、正電荷のアルキルアミン(イオンペア試薬)の相互作用で保持を制御します。試薬は強さで分かれ、 弱(トリエチルアミン, TEA)・中(ジブチルアミン, DBA)・強(トリブチルアミン, TBA)を選び分けます。 選択性の最適化(例:TBA系の移動相)で、従来分けにくかった n-1 や PO 副生成物の分離を改善した報告もあります (J. Chromatogr. A, 2025)。

HFIPとPFAS問題

揮発性カウンターイオンとしてヘキサフルオロイソプロパノール(HFIP)を加えると、ESI液滴の表面電荷が増し、 LC-MS感度が大きく向上します(報告では数桁)。しかし HFIP はPFAS(有機フッ素化合物)であり、環境・毒性の懸念から、 酢酸/グリシン系の代替や、溶媒使用量を大幅に減らすマイクロLCなど「グリーン化」への移行が進んでいます(総説)。

実務の要点:高温と非特異吸着対策

  • 高温で「直線化」:通常 60〜90 ℃で分離する。高温は二次構造(Gカルテット等)をほどいて分子を直線化し、 さらにPSジアステレオマーの分離を抑制して、定量に必要な鋭い単一ピークを得る鍵になる。
  • 非特異吸着(NSA)対策は必須:微量不純物が金属表面に吸着して失われるのを防ぐため、bioinert/高性能表面(HPS)の ハードウェア・カラム(例:金属不活性化表面の ACQUITY Premier、L-column3 C18 など)を使う。回収率・再現性に直結する (総説 / Anal. Chim. Acta, 2023)。

4. HILIC ― 直交する相補手法

図解:HILIC。IP-RPに直交する選択性。PO不純物が全長体(FLP)の後に、n-1が前に溶出して分離できる
図解:HILIC(直交する相補手法)― IP-RPに直交。PO不純物がFLPの後に、n-1が前に溶出して分離できるのが解像の鍵。

親水性相互作用クロマトグラフィー(HILIC)は、イオンペア試薬を使わずに直交した選択性を与える強力な相補手段です。

  • 保持の論理:塩基の親水性で保持が決まり、概ね A < T < G < C < U の順に溶出。
  • 「PO問題」を解く:IP-RP では PO 不純物が主ピークに重なりやすいのに対し、HILIC では PO 不純物は全長体(FLP)の後に、n-1 truncated 体は前に溶出し、分離できる(Gilar ら, J. Chromatogr. A, 2023)。
  • siRNAの温度制御:融解温度(T_m)未満では二重鎖を保ったまま二重鎖純度を、T_m 超では各鎖の純度を評価できる (bioinert アミドカラム使用、Waters Application Note, 2024)。HILICでのPSジアステレオマー分離は分子構造に依存することも 示されています(Lardeux ら, Analytical Chemistry, 2024)。

5. 2D-LC ― 解けないプロファイルを解く

図解:2D-LC。AEX/IP-RP×HILICのハートカットで、HILICがオンライン脱塩しつつ高分解能を与え、0.3%級まで特性解析
図解:2D-LC(ハートカット)― AEX/IP-RP×HILIC。HILICがオンライン脱塩しつつ高分解能を与え、0.3%級まで特性解析。

一次元で複雑な不純物クラスターを分けきれないとき、ハートカット2D-LCが必要なピークキャパシティを供給します。

  • 構成:一次元に陰イオン交換(AEX)またはIP-RP、二次元にHILICを組む(Goyon & Zhang, Analytical Chemistry, 2020)。
  • オンライン脱塩という利点:AEXの不揮発性塩やIP-RPの高濃度添加剤はMSイオン源を汚す。2D-LCではHILICが オンライン脱塩として働き、MSを保護しつつ追加の分解能を与える。
  • 感度:この直交プラットフォームで、不純物を0.3%レベルまで特性解析できることが示されています(Goyon & Zhang, 2020)。

GalNAc/脂質などのバイオコンジュゲートでは、重なり合う複雑プロファイルの解像と脱塩の両面で 2D-LC が要になります。

6. 検出の「眼」 ― 高分解能MSとイオンモビリティ

図解:検出。高分解能MS(HRMS)で精密質量・配列確認(DNA:a-B/w、RNA:c/y)、イオンモビリティで同重体位置異性体・PSジアステレオマーを識別
図解:検出の「眼」 ― HRMSで精密質量・配列確認(DNA:a-B/w、RNA:c/y)、イオンモビリティで同重体異性体・PSジアステレオマーを識別。

クロマトのピークの「正体」を与えるのが質量分析です。Orbitrap系などの高分解能MS(HRMS)で精密質量を確認し、 専用ソフトでデコンボリューション・同定します。配列確認には断片イオンを使い、その様式は核種で異なります。

分子種 主な断片イオン
DNA a-B イオンと w イオン
RNA c イオンと y イオン

さらにイオンモビリティ分光(IMS)は、ガス相で形・大きさによる分離軸を足し、同重体の位置異性体や、 LCで分けにくいPSジアステレオマーの識別に有効です(総説)。イオンモビリティの原理は質量分析の記事も参照ください。

7. 規制対応とサステナビリティ

図解:規制とサステナビリティ。EMA 2024の閾値(同定1.0%・確認1.5%)、マイクロLCと脱PFAS(HFIP低減)
図解:規制とサステナビリティ ― EMA 2024の閾値(同定1.0%・確認1.5%)、マイクロLC・脱PFAS(HFIP低減)。

分析戦略は規制と歩調を合わせます。EMAの2024年ガイドライン(オリゴ核酸の開発・製造)では、不純物管理の 閾値の目安として、同定(identification)1.0%・確認(qualification)1.5%が一般に受容可能とされています (EMA, 2024)。報告(reporting)閾値は手法依存ですが、現代的手法では概ね 0.2% 程度を狙うのが実務的な基準です。

今後の鍵はサステナビリティです。マイクロLCによる環境負荷低減や、非IP-RP/HILICの最適化による PFAS(HFIP)負荷の最小化が、メソッド開発の中心テーマになりつつあります。

8. 分析者の視点 ― 実装の指針

図解:実装の指針。不純物の地図→NSA対策(HPS)→IP-RPとHILICの直交活用→複雑構築物は2D-LC→HRMS+IMSで同定→規制と脱PFAS
図解:実装の指針 ― 不純物を定義→NSA対策(HPS)→IP-RP×HILICの直交活用→複雑構築物は2D-LC→HRMS+IMSで同定→規制と脱PFAS。
  • まず不純物の地図を描く:n-1/ロングマー・PO変換・脱プリン・PSジアステレオマー、何が問題かを定義。
  • 微量を逃さない:bioinert/HPS ハードウェアでNSAを抑える(回収率・再現性の前提)。
  • 直交性を使う:IP-RP と HILIC を相補的に。HILIC では PO が FLP の後に出る点が解像の決め手。
  • 複雑構築物は 2D-LC:AEX/IP-RP × HILIC でオンライン脱塩+高分解能。0.3%級まで。
  • 同定は HRMS(+IMS):断片イオン(DNA: a-B/w、RNA: c/y)で配列確認、難分離異性体は IMS。
  • 規制と環境:EMA 2024 の 1.0%/1.5% 閾値を念頭に、マイクロLC・脱PFAS で将来に備える。

まとめ

  • オリゴ核酸医薬の不純物はプロセス由来(n-1/ロングマー)・分解(脱プリン・PS→PO)・PSジアステレオマーが中心。
  • IP-RPがゴールドスタンダード(TEA/DBA/TBA、HFIPで高感度だがPFAS問題、高温で直線化+ジアステレオマー抑制、NSA対策必須)。
  • HILICは直交手段で、PO不純物がFLPの後に溶出するのが解像の鍵。siRNAは温度で二重鎖/単鎖純度を切替。
  • 2D-LC(AEX/IP-RP×HILIC)はオンライン脱塩+高ピークキャパシティで、0.3%級・バイオコンジュゲートに対応。
  • 同定はHRMS(断片イオン)+IMS。規制はEMA 2024(同定1.0%/確認1.5%)、潮流はマイクロLC・脱PFAS

次回以降、各手法の実装(2D-LCのメソッド設計、HILICのsiRNA純度評価、HRMSの配列確認ワークフロー)を個別に掘り下げます。

用語集(クイックリファレンス)

  • ASO / siRNA:アンチセンスオリゴ/低分子干渉RNA。代表的なオリゴ核酸医薬。
  • ショートマー / ロングマー:n-1等の短い欠失体/n+1等の伸長体。固相合成由来の代表的不純物。
  • PS / PO:ホスホロチオエート(硫黄置換)/ホスホジエステル結合。PS→PO変換は代表的分解。
  • PSジアステレオマー:各Pのキラル中心が生む立体異性体。20-merで数千種、ピークを広げる。
  • IP-RP:イオンペア逆相。負電荷骨格をアルキルアミンで対イオン化して保持。MS直結の主役。
  • HFIP:揮発性フッ素アルコール。ESI感度を高めるが PFAS 問題がある。
  • HILIC:親水性相互作用。IP-RPに直交。POがFLPの後に出るのが特長。
  • 2D-LC(ハートカット):2軸分離。AEX/IP-RP×HILICでオンライン脱塩+高分解能。
  • NSA / HPS:非特異吸着/高性能(金属不活性化)表面。微量回収の鍵。
  • EMA閾値:同定1.0%・確認1.5%(2024ガイドライン)。

出典

  • Goyon, Zhang「Characterization of Antisense Oligonucleotide Impurities by IP-RP and Anion Exchange Coupled to HILIC/MS Using a Versatile 2D-LC Setup」Analytical Chemistry, 2020, 92(8), 5944–5951, 10.1021/acs.analchem.0c00114 — https://pubs.acs.org/doi/10.1021/acs.analchem.0c00114
  • Gilar, Koshel, Birdsall「Ion-Pair Reversed-Phase and HILIC Methods for Analysis of Phosphorothioate Oligonucleotides」Journal of Chromatography A, 2023, 1712, 464475 — https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0021967323005526
  • Lardeux et al.「Unravelling the Link between Oligonucleotide Structure and Diastereomer Separation in HILIC」Analytical Chemistry, 2024, 96(24), 10.1021/acs.analchem.4c01384 — https://pubs.acs.org/doi/10.1021/acs.analchem.4c01384
  • 「Advances in Analysis of Therapeutic Oligonucleotides with Chromatography Coupled to Mass Spectrometry」Analytical Chemistry(総説), 10.1021/acs.analchem.5c06656 — https://pubs.acs.org/doi/10.1021/acs.analchem.5c06656
  • European Medicines Agency「Guideline on the Development and Manufacture of Oligonucleotides」(2024, draft) — https://www.ema.europa.eu/en/documents/scientific-guideline/draft-guideline-development-manufacture-oligonucleotides_en.pdf
  • Obata, Sakamaki「Improving the Chromatographic Separation of Phosphorothioate Oligonucleotide from Impurities by Optimizing Selectivity」Journal of Chromatography A, 2025, 1750, 465915 — https://www.sciencedirect.com/

注記:閾値・感度・温度などの数値は各出典の報告・発表時点のもの(EMAガイドラインはドラフト)。試料・カラム・装置で結果は変わります。導入・規制対応の際は最新のメーカー資料・原著・規制文書で再確認してください。

制作メモ:本記事はディープリサーチ(NotebookLM)で一次情報候補を収集し、主要な主張・数値・出典を編集側で原著にあたって検証したうえで執筆しています。